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castPCR Genotyping Master Mix
castPCR Genotyping Master Mix
产品编号:P4310
产品规格:5*1mL/10*1mL
产品价格:1700/3200
包装:支
储存条件:-20℃
castPCR Genotyping Master Mix
包装规格:
目录 | 产品名称 | 规格 | 目录价 |
P4310-5 | castPCR Genotyping Master Mix | 5*1ml | 1700 |
P4310-10 | castPCR Genotyping Master Mix | 10*1ml | 3200 |
储运温度:
-20℃长期保存,避免反复冻融,短期使用可放4℃。
产品说明:
castPCR Genotyping Master Mix是采用Taqman探针法竞争性等位基因特异性PCR技术(Competitive Allele-Specific Taqman PCR,castPCR)进行SNP分析以及检测InDels (Insertions and Deletions,插入和缺失)的专用2 x 预混液,只需要额外加入预先设计好的Allele 1特异检测引物,Allele 2特异检测引物,Locus特异扩增引物,模板和灭菌蒸馏水即可进行SNP分析以及检测InDels,使用方便,采用全自动核酸提取仪、PCR仪,3 种荧光的荧光定量PCR 仪或多通道荧光读板机(酶标仪),灵活采用96孔板、384孔板,一天可检测几万个SNP 位点。
精心研制的抗体修饰热启动Taq酶,Allele 1 FAM 荧光通用引物和Allele 2 HEX 荧光通用引物,配合反复优化的Buffer,增强了在低浓度和复杂模板上的分型成功率,同时本产品提供ROX Reference Dye用于校正加样孔之间的体积误差和荧光信号误差,不用Reference Dye校正的qPCR扩增仪器,使用时无需添加ROX。
实验过程:
用Real-time PCR system型荧光定量PCR仪,采用基因分型-终点测定法对样品进行检测。96孔PCR 板及384 孔板最小反应体系分别为10μL和5μL。
1. 反应液的配置分装,务必使用无污染的新吸头,EP管,尽量避免污染。
2. 溶解所有用到的试剂,轻柔上下颠倒混匀,短暂瞬时离心将溶液甩至管底;
3.按下列组份配制qPCR混合液,将除模板以外的试剂混成mix,再分装到单个PCR管内,最后加入模板DNA。
PCR体系配制 |
体积(5μL体系) |
体积(10μL体系) |
体积(20μL体系) |
2 x castPCR Genotyping Master Mix |
2.5μL |
5μL |
10μL |
Allele 1 primer(10μM) |
0.075μL |
0.15μL |
0.3μL |
Allele 2 primer(10μM) |
0.075μL |
0.15μL |
0.3μL |
Common primer(10μM) |
0.2μL |
0.4μL |
0.8μL |
DNA template |
10-100 ng |
10-100 ng |
10-100 ng |
ddH2O |
补水至5μL |
补水至10μL |
补水至20μL |
注意:长期保存2 x castPCR Genotyping Master Mix置于-20℃,4℃保存可保存1周,冻融请勿超过 3 次。
4.短暂瞬时离心后放入荧光定量PCR仪中运行,qPCR反应程序如下:
实验流程 |
温度 |
时间 |
循环数 |
检测荧光 |
预变性 |
94℃ |
15 min |
1 X |
Off |
变性 |
94℃ |
20 sec |
10 X |
Off |
退火-延伸 |
61-55℃ |
60 sec(下降 0.6℃/循环) |
Off |
|
变性 |
94℃ |
20 sec |
26-32 X |
Off |
退火-延伸 |
55℃ |
60 sec |
Off |
|
荧光采集 |
37℃ |
60 sec |
1 X |
On |
5.其他循环条件:
如果未获得明确的基因分型簇,则应将平板热循环额外3-10个循环,并再次读取。
实验流程 |
温度 |
时间 |
循环数 |
检测荧光 |
变性 |
94℃ |
20 sec |
3-10 X |
Off |
退火-延伸 |
55℃ |
60 sec |
Off |
|
荧光采集 |
37℃ |
60 sec |
1 X |
On |
分型失败问题分析:
若分型失败,请尝试以下几种解决方案:
(1)DNA 浓度过低。保证每个反应体系内有 10ng 以上模板DNA,大基因组物种如小麦,请保证 100ng 以上。
(2)DNA 含有大量 PCR 抑制剂,请将模板进行梯度稀释再次尝试,或者重新纯化 DNA。
(3)DNA 浓度严重不均一,分型较差的样本 DNA 含量过低。请重新准备 DNA 样本。
(4)PCR 循环太少。
(5)实际上分型已经成功,但群体中只有一种等位基因型,因缺乏其它等位基因的对照,导致分型误判。
(6)引物自身扩增差。请更换扩增好的引物进行实验。
(7)引物失效,请重新合成引物。
(8)试剂失效。请在有效期内使用 。请将待使用的 试剂储存在-20℃冰箱中,并减少冻融次数。
(9)使用不合格 PCR 板(管),请确认该耗材可以正常进行 PCR 扩增。在洁净度差的场所生产的板子,或者某些带有荧光增白剂的 PCR 板(尤其是部分白色板子),有非常严重的自荧光现象,导致信号异常。
(10)若只有杂合和一种亲本等位基因型,缺少另一种亲本等位基因型。A)请检查群体是否为回交世代;B) 异源多倍体的位点多拷贝现象,请设计单一拷贝特异引物;C)该等位突变纯合致死,无纯合现象,或纯合现象罕见。
(11)若出现单个严重离群点,请检查:A)该 PCR 孔内是否有颜色污染;B)该 PCR 孔是否漏加/破损泄露/ 蒸发。请删除该数据点,并重新实验。
背景知识:
等位基因特异扩增(Allele specific PCR, ASP)
在 PCR 技术发明几年后的 1988年,等位基因特异扩增(ASP)/扩增受阻突变体系(Amplification refractory muta- tion system,ARMS)技术出现。该技术原理简单,即利用引物3’最后1~4个尤其是最后1个碱基的差异,区分并特异扩增特定等位基因 DNA 片段。
天然 DNA 聚合酶对 3’最后几个碱基的复性匹配/错配选择并不好,早期应用该技术须有额外的手段保证选择性。如在引物末端人为引入新错配,或者调整 PCR 退火温度, 但这些手段相对复杂且有稳定性问题,一直困扰着这个原理简单的 SNP 分型技术,因而应用并不广泛 。
KASP技术从根本上解决了 DNA 聚合酶及 PCR 体系对 SNP 识别的问题,能严格进行特异扩增,产生正确的等位基因扩增信号。
荧光共振能量转移(Fluorescence resonance energy transfer,FRET)
荧光基团和对应荧光淬灭基团距离较近时,荧光基团发出的荧光,会被淬灭基团吸收,发射出更长波长的荧光或者放出热量。此时在此荧光对应的波长内检测不到该基团荧光信号。一旦二者分离, 则荧光信号可被检测到。
采用了 FRET 原理来检测 FAM 以及 HEX 荧光引物的扩增信号,对应的等位基因发生扩增时,将出现对应的荧光信号。
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